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Tipo: Dissertação
Título: Ocorrência, isolamento e caracterização de Azospirillum sp. em Jacaratia corumbensis O. Kuntze (Jaracatiá)
Autor(es): de Oliveira, Romário Crisostomo
Primeiro orientador: Paggi, Gecele Matos
Primeiro coorientador: Brasil, Marivaine da Silva
Primeiro membro da banca: Garcia, Nayara Fernanda Lisboa
Segundo membro da banca: Corrêa, Bianca Obes
Terceiro membro da banca: da Silva, Rosa Helena
Quarto membro da banca: Cury, Juliano de Carvalho
Resumo: A capacidade de fixação biológica do nitrogênio atmosférico por bactérias diazotróficas impulsiona os estudos de ocorrência, isolamento, caracterização e até mesmo seleção de estirpes eficientes em promover o crescimento vegetal. Porém, no Brasil, poucos estudos têm destacado a interação entre bactérias e plantas nativas, principalmente frutíferas. Diante do exposto, o objetivo deste estudo foi registrar a ocorrência, isolar e caracterizar bactérias do gênero Azospirillum associadas à Jacaratia corumbensis O. Kuntze, bem como verificar a habilidade dos isolados bacterianos quanto a produção de substâncias promotoras de crescimento vegetal. Para isto, foram coletados amostras de folhas, raízes e solo rizosférico de três indivíduos da espécie vegetal de duas áreas: Assentamento Taquaral e Assentamento Jacadigo, localizadas à cerca de 15 km da cidade de Corumbá, Mato Grosso do Sul. A verificação da ocorrência e isolamento das bactérias das partes amostradas de cada planta foram realizados por meio da técnica do Número Mais Provável utilizando os meios de cultura semissólidos NFB e LGI (isentos de nitrogênio) semi-seletivos para os gêneros Azospirillum sp. e Nitroaspirillum sp. (anteriormente Azospirillum amazonense). A contagem foi realizada com base na presença de película (em forma de véu), seguindo a Tabela de McCrady para três repetições por diluição. Após o crescimento positivo os frascos das maiores diluições foram repicados sucessivamente para meios semissólidos e sólidos semi-específicos (NFb/LGI) para confirmar o caráter diazotrófico. A caracterização morfológica dos isolados foi feita em meio sólido Batata, no qual a morfologia das colônias foi avaliada visualmente. As características geradas para cada isolado bacteriano foram comparadas e as suas semelhanças estimadas pelo Índice de Jaccard obtidos pelo algoritmo UPGMA. Foram isoladas 147 bactérias, das quais 50 apresentaram perfil diazotrófico. Estas foram selecionadas para avaliação das características funcionais relacionadas a produção de substâncias promotoras de crescimento vegetal, como solubilização de fosfatos de alumínio e cálcio, atividades amilolítica, fosfatases ácida e alcalina, e produção de Ácido indolacético. Além disso a variabilidade genética destes isolados foi analisada pela técnica do Box A1R-PCR e os perfis dos amplicons gerados de cada isolado foram agrupados pelo método UPGMA. Os resultados mostraram que não houve diferença significativa no Número Mais Provável de bactérias diazotróficas entre as áreas de estudo. Os isolados apresentaram alta variabilidade fenotípica e genotípica, sendo observada a formação de sete grupos a 70% e 77% de similaridade. O meio de cultivo com maior representatividade foi o NFb, sugerindo que os isolados bacterianos obtidos nesse estudo pertencem ao gênero Azospirillum. Do total, 36% dos isolados produziu AIA, 16% solubilizou fosfato de cálcio, 24% apresentou atividade fosfatase ácida, 22% apresentou atividade fosfatase alcalina e 66% apresentou atividade amilolítica, sugerindo que estes isolados apresentam potencial para promoção de crescimento. Assim, é o primeiro estudo de bactérias diazotróficas do gênero Azospirillum associadas à J. corumbensis para o Estado de Mato Grosso do Sul.
Abstract: The capacity for biological nitrogenfixation by diazotrophic bacteria rises the studies of occurrence, isolation, characterization and selection of new strains efficient in plant growth promotion. However, in Brazil, few studies have focus on the interactions between bacteria community and native plant species, specifically fruit plants. Therefore, the aim of this study was to record the occurrence, to isolate and to characterize Azospirillum bacteria from Jacaratia corumbensis O. Kuntze, as well as, to verify the ability of the bacteria strains regarding the production of substances related to plant growth promotion. For this, leaves, roots, and rhizospheric soil samples of the plant species were collected from two areas (three individuals each): Settlement Taquaral and Settlement Jacadigo, located around 15 km far from Corumbá city, Mato Grosso do Sul state. To verify and isolate bacteria from each sampled part of the plant, we performed the Most Probable Number (MPN) approach, using the semisolid culture mediums NFB and LGI (nitrogen-free), which are semi-selective for the genera Azospirillum sp. and Nitroaspirillum sp. (previously Azospirillum amazonense). The counting was conducted considering the presence of a pellicle, following McCrady table for three repetitions per dilution. After positive growth, the flakes of bigger dilutions were transferred to semisolid and solid media (NFb/LGI) in order to confirm the diazotrophic character. The morphological characterization of bacteria strains was performed by growing colonies in Potato solid medium, and analyzing them visually. Morphological characters of each bacteria strain were compared and their similarities were estimated by Jaccard index using the UPGMA software. We isolated 147 bacteria, from that, 50 presented a diazotrophic profile. Those 50 bacteria were then used to evaluate functional feature related to the production of certain substances involved in plant growth promotion, such as aluminum and calcium phosphate solubilization, amylolytic and acid and alkaline phosphatase activities, and indolacetic acid (IAA) production. Besides, the strains genetic variability was analyzed using the Box A1R-PCR technic; the profiles obtained from each strain were grouped using UPGMA method. The Most Probable Number (MPN) was not significantly different between the two studied areas. The bacteria strains presented high phenotypic and genotypic variation, forming seven groups with around 70% and 77% of similarity. Most bacteria strains were obtained from NFb medium, suggesting that they may belong to Azospirillum genus. From the 50 bacteria strains, 36% produced IAA, 16% solubilized calcium phosphate, 24% presented acid phosphatase activity, 22% presented alkaline phosphatase activity, and 66% presented amylolytic activity, suggesting that these strains presented potential for plant growth promotion. Thereby, this is the first study regarding Azospirillum diazotrophic bacteria associated with J. corumbensis in the Mato Grosso do Sul state.
Palavras-chave: Box A1R-PCR
diazotróficas
FBN
jaracatiá
CNPq: Botânica
Idioma: por
País: Brasil
Editor: Fundação Universidade Federal de Mato Grosso do Sul
Sigla da Instituição: UFMS
Faculdade, Instituto ou Escola: INBIO
metadata.dc.publisher.program: Programa de Pós-Graduação em Biologia Vegetal
Citação: Aguiar LF, Almeida CA, Camargos LS (2012) A Caracterização bioquímica da composição do cerne de Jaracatiá (Jaracatia spinosa). Act Igu 1:65-71. Alariya SS, Sethi S, Gupta S, Gupta BL (2013) Amylase activity of a starch degrading bacteria isolated from soil. Arch Appl Sci Res 5:15-24. Ambrosini A, Beneduzi A, Stefanski T, et al (2012) Screening of plant growth promoting Rhizobacteria isolated from sunflower (Helianthus annuus L.). Plant Soil 356:245- 264. doi: 10.1007/s11104-011-1079-1. Araujo FF, Guaberto LM, Silva IF (2012) Bioprospecção de rizobactérias promotoras de crescimento em Brachiaria brizantha. Rev Bras Zootec. doi: 10.1590/S1516- 35982012000300007. Arruda L, Beneduzi A, Martins A, et al (2013) Screening of rhizobacteria isolated from maize (Zea mays L.) in Rio Grande do Sul State (South Brazil) and analysis of their potential to improve plant growth. Appl Soil Ecol. doi: 10.1016/j.apsoil.2012.09.001. Baldani JI, Reis VM, Videira SS, et al (2014) The art of isolating nitrogen-fixing bacteria from non-leguminous plants using N-free semi-solid media: a practical guide for microbiologists. Plant Soil. doi: 10.1007/s11104-014-2186-6. Baldotto LEB, Baldotto MA, Olivares FL, Souza AN (2014) Performance of pineapple slips inoculated with diazotrophic phosphate-solubilizing bacteria and rock phosphate. Rev Ceres. doi: 10.1590/S0034-737X2014000300017. Bashan YB, de-Bashan LE (2010) How the plant growth-promoting bacterium Azospirillum promotes plant growth - a critical assessment. Adv Agron 108:77- 136. https://doi.org/10.1016/S0065-2113(10)08002-8. Bashan Y, Kamnev AA, De-Bashan LE (2013) A proposal for isolating and testing phosphate-solubilizing bacteria that enhance plant growth. Biol Fertil Soils. doi: 10.1007/s00374-012-0756-4. Bashan YB, de-Bashan LE, Prabhu S, Hernandez J-P (2014) Advances in plant growthpromoting bacterial inoculant technology: formulations e practical perspectives (1998-2013). Plant Soil, 378:1-33. Bednarczuk VO, Verdam MCS, Miguel MD, Miguel OG (2010) Tests in vitro e in vivo used in the toxicological screening of natural products. Vis Acad. Curitiba 11:43-50. Beneduzi A, Moreira F, Costa PB, Vargas LK, Lisboa BB, Favreto R, Passaglia LMP (2013) Diversity e plant growth promoting evaluation abilities of bacteria isolated from sugarcane cultivated in the South of Brazil. Appl Soil Ecol, 63:94-104. doi: 10.1016/j.apsoil.2012.08.010. Berraquero FR, Baya AM, Cormenzana AR (1976) Establecimiento de índices para el estudio de la solubilización de fosfatos por bacterias del suelo. Acta Pharm 17:399-406. Brahmaprakash GP, Sahu PK, Lavanya G, Nair SS, Gangaraddi VK. Gupta A (2017) Microbial functions of the rhizosphere. In: Plant-microbe interactions in agroecological perspectives. Springer, Singapore pp 177-210. Busato JG, Lima LS, Aguiar NO, et al (2012) Changes in labile phosphorus forms during maturation of vermicompost enriched with phosphorus-solubilizing and diazotrophic bacteria. Bioresour Technol. doi: 10.1016/j.biortech.2012.01.126. Carvalho NL, Zabot V (2012) Nitrogênio: nutriente ou poluente. Rev Eletrônica Gest Educ Tecnol Ambient (e-ISSN: 2236-1170) 6:960-974. Cavalcanti NB, Resende GM, Brito LTL (2009) Efeito de diferentes substratos no crescimento do mamãozinho-de-veado. Eng Amb 6:434-446. Chagas Junior AF, Oliveira LA, Oliveira AN, Willerding AL (2010) Capacidade de solubilização de fosfatos e eficiência simbiótica de rizóbios isolados de solos da Amazônia. Acta Sci - Agron 32:359–366. doi: 10.4025/actasciagron.v32i2.3185. Chahboune R, Barrijal S, Moreno S, Bedmar EJ (2011) Characterization of Bradyrhizobium species isolated from root nodules of Cytisus villosus grown in Morocco. Syst appl Microbiol 34:440-445. doi: 10.1016/j.syapm.2011.04.008. Chueire LMO, Nishi CYM, Loureiro MF, Hungria M (2000) Identificação das estirpes de Bradyrhizobium e Rhizobium utilizadas em inoculantes comerciais para as culturas da soja e do feijoeiro pela técnicade PCR com “primers” aleatórios ou específicos. Agri Trop 4:80-95. Compant S, Clément C, Sessitsch A (2010) Plant growth-promoting bacteria in the rhizoand endosphere of plants: their role, colonization, mechanisms involved and prospects for utilization. Soil Biol Biochem, 42: 669-678. Costa PB, Beneduzi A, Souza R, et al (2013) The effects of different fertilization conditions on bacterial plant growth promoting traits: Guidelines for directed bacterial prospection and testing. Plant .Soil 368:267–280. doi: 10.1007/s11104- 012-1513-z Damasceno GA, Souza PR (2010) Sabores do Cerrado e Pantanal. Editora UFMS, Campo Grande-MS. Diniz PFA, Oliveira LEM, Lopes NA, Florentino LA, Carvalho TS, Moreira FMS (2012) Bactérias diazotróficas em solos sob seringueira. Rev Bras Cien Solo. doi: 10.1590/S0100-06832012000500006. Döbereiner J, Baldani VLD, Baldini JI (1995) Como Isolar e identificar bactérias diazotróficas de plantas não-leguminosas. Embrapa-SPI, Brasília-DF, EmbrapaCNPAB, Itaguaí- RJ. Fachinello JC, Nachtigal JC, Kersten E (2008) Fruticultura: fundamentos e práticas. Pelotas. Ferreira DF (2014) Sisvar: a Guide for its Bootstrap procedures in multiple comparisons. In Ciência 38:109-112. Fernandes-Júnior PI, Duarte PGM, Perin L, Silva LM, Baraúna AC, Alves FM, Zilli JE (2013) Diazotrophic bacteria isolated from wild rice Oryza glumaepatula (Poaceae) in the Brazilian Amazon. Rev Biol Trop 61:991-999. doi: 10.15517/rbt.v61i2.11238 Freitas ADS, Vieira CL, Santos CERS, Stamford NP, Lyra MCCP (2007) Caracterização de rizóbios isolados de jacatupé cultivado em solo salino do estado de Pernambuco, Brasil. Bragantia 66:497-504. doi: 10.1590/S0006- 87052007000300017 Fukami J, Nogueira MA, Araujo RS, Hungria M (2016) Accessing inoculation methods of maize and wheat with Azospirillum brasilense. AMB Express 6:1. doi: 10.1186/s13568-015-0171-y. Fukami J, Cerezini P, Hungria M (2018). Azospirillum: benefits that go far beyond biological nitrogen fixation. AMB Express 8:73. doi: 10.1186/s13568-018-0608-1. Garrity GM, Bell JA, Lilburn TG (2004) Taxonomic outline of the procaryotes. Bergey's Manual of Systematic Bacteriology. Michigan State University. Gaviria-Giraldo J, Restrepo-Franco GM, Galeano-Vanegas NF, Hernández-Rodríguez A (2018) Bacterias diazotróficas con actividad promotora del crecimiento vegetal en Daucus carota L. Rev Cien Agri 15:19-27. doi: 10.19053/01228420.v15.n1.2018.7753. Glick BR (2012) Plant growth-promoting bacteria: mechanisms and applications. Sci. doi: 10.6064/2012/963401 Hammer Ø, Harper D, Ryan P (2001) Past: Paleontological statistics software package for education and data analysis. Paleontol Electron 4(1): 9pp. http://palaeoelectronica.org/2001_1/past/issue1_01.htm. Hassler M (2019) World Plants: Synonymic Checklists of the Vascular Plants of the World (version Nov 2018). In: Species 2000 & ITIS Catalogue of Life, 2019 Annual Checklist (Roskov Y, Ower G, Orrell T, Nicolson D, Bailly N, Kirk PM, Bourgoin T, DeWalt RE., Decock W., Nieukerken EV, Zarucchi J, Penev L., eds.). Digital resource at www.catalogueoflife.org/annual-checklist/2019. Species 2000: Naturalis, Leiden, the Netherlands. ISSN 2405-884X. http://www.catalogueoflife.org/col/details/database/id/141. Acesso em: 27 Maio 2019. Hungria M, Campo RJ, Souza EM, Pedrosa FO (2010) Inoculation with selected strains of Azospirillum brasilense and A. lipoferum improves yields of maize and wheat in Brazil. Plant Soil 331:413-425. Hungria M (2011) Inoculação com Azospirillum brasiliense: inovação em rendimento a baixo custo. Documentos, 325. Embrapa Soja, Londrina. https://ainfo.cnptia.embrapa.br/digital/bitstream/item/29676/1/Inoculacao-comAzospirillum.pdf . Acesso em: 28 Maio 2019. Illmer P, Barbato A, Schinner F (1995) Solubilization of hardly-soluble AlPO4 with Psolubilizing microorganisms. Soil Biol Biochem. doi: 10.1016/0038- 0717(94)00205-F. Kinupp VF (2007) Plantas Alimentícias não convencionais da Região Metropolitana de Porto Alegre, RS. Tese de doutorado, Universidade Federal do Rio Grande do Sul, Porto Alegre. Krishnan P, Bhat R, Kush A, Ravikumar P (2012) Isolation and functional characterization of bacterial endophytes from Carica papaya fruits. J Appl Microbiol 113:308–317. doi: 10.1111/j.1365-2672.2012.05340.x. Leff E (2002) Agroecologia e saber ambiental. In: Agroecologia e Desenvolvimento Rural Sustentável. Porto Alegre, pp 36-51. Leite M, Pereira A, Souza A, et al (2018a) Potentially Diazotrophic Endophytic Bacteria Associated to Sugarcane are Effective in Plant Growth-promotion. J Exp Agric Int. doi: 10.9734/jeai/2018/39963. Leite MCBS, Pereira APA, Souza AJ, Andreote FD, Freire FJ, Sobral JK (2018b) Bioprospection and genetic diversity of endophytic bacteria associated with cassava plant. Rev Caatinga. doi: 10.1590/1983-21252018v31n207rc. Lima LR, Pirani JR (2002) Caricaceae. In: Wanderley MGL; Shepherd GJ; Giulietti AM; Melhem TS; Bittrich V; Kameyama C (eds) Flora Fanerogâmica do Estado de São Paulo. Instituto de Botânica, São Paulo, pp. 79-82. Lorenzi H (2002) Árvores brasileiras: manual de identificação e cultivo de plantas arbóreas nativas do Brasil. Instituto Plantarum de Estudos da Flora, Nova OdessaSP. Massenssini AM, Tótola MR, Borges AC, Costa MD (2015) Solubilização potencial de fosfatos mediada pela microbiota rizosférica de eucalipto cultivado em topossequência típica da zona da mata mineira. Rev Bras Cienc Solo. doi: 10.1590/01000683rbcs20140339. Matos ADM, Gomes ICP, Nietsche S, et al (2017) Phosphate solubilization by endophytic bacteria isolated from banana trees. An Acad Bras Cienc. doi: 10.1590/0001- 3765201720160111. Mendes GO, Freitas ALM, Pereira OL, et al (2014) Mechanisms of phosphate solubilization by fungal isolates when exposed to different P sources. Ann Microbiol. doi: 10.1007/s13213-013-0656-3. Mia MAB, Shamsuddin ZH, Mahmood M (2010) Use of Plant Grouth Promoting Bacteria in Banana: A new insight for sustainable Banana Production. Int J Agr Biol 12:459-467. Milani KML, Machineski O, Balota EL (2011) Ocorrência e isolamento de bactérias diazotróficas associadas à cana-de-açúcar. Enciclopédia Biosf Cent Científico Conhecer- Goiânia 7:1345-1351. Moraes LFD, Assumpção JM, Luchiari C, Pereira TS (2006) Plantio de espécies arbóreas nativas para a restauração ecológica na reserva biológica de Poço das Antas. Rod 57:477-489. doi: 10.1590/2175-7860200657307 Moreira FMS, Siqueira JO (2006) Microbiologia e bioquímica do solo. 2a ed. UFLA, Lavras, Brasil. Moreira FMS, Silva K, Nóbrega RSA, Carvalho F (2010) Bactérias diazotróficas associativas: diversidade, ecologia e potencial de aplicações. Comun Sci 1:74-99 Nahas E, Centurion J, Assis L (1994) Microrganismos solubilizadores de fosfato e produtores de fosfatases de vários solos. Rev Bras Ciênc Solo 18:43-48. Nahas E (2002) Microrganismos do solo produtores de fosfatases em diferentes sistemas agrícolas. Bragantia. doi: 10.1590/S0006-87052002000300008. Nunes GF de O, Menezes KAS, Sampaio AA, et al (2018) Polyphasic characterization of forage legumes root nodule bacteria isolated from semiarid region in Brazil. Rev Ciênc Agra 41:612–624. doi: 10.19084/rca17339. Oliveira AN de, Oliveira LA de, Andrade JS, Chagas-Júnior AF (2007) Produção de amilase por rizóbios, usando farinha de pupunha como substrato. Ciência e Tecnol Aliment. doi: 10.1590/s0101-20612007000100011. Pereg L, de-Bashan LE, Bashan Y (2016) Assessment of affinity e specificity of Azospirillum for plants. Plant Soil 399:389-414. doi: 10.1007/s11104-015-2778-9 Pontes AP, Souza R, Granada CE, Passaglia LMP (2015) Screening of plant growth promoting bacteria associated with barley plants (Hordeum vulgare L.) cultivated in South Brazil. Biota Neotrop 15(2): e20140105. doi: 10.1590/1676- 06032015010514. Pott A, Pott VJ (1994) Plantas do Pantanal. Embrapa Pantanal, Corumbá-MS. Ramos RF, Sobucki L, Rohrig B, et al (2018) Diversidade funcional de bactérias isoladas de solos rizosférico e não rizosférico em cultura de milho. Rev Ciênc Agrovet 17:417-427. doi: 10.5965/223811711732018417. Rangjaroen C, Rerkasem B, Teaumroong N, et al (2015) Promoting plant growth in a commercial rice cultivar by endophytic diazotrophic bacteria isolated from rice landraces. Ann Microbiol 65(1):253-266. doi: 10.1007/s13213-014-0857-4. Reis FB, Silva MF, Tekeira KRS, et al (2004) Identificação de isolados de Azospirillum amazonense associados a Brachiaria spp., em diferentes épocas e condições de cultivo e produção de fitormônio pela bactéria. R Bras Ci Solo 28:103-113. doi: 10.1590/S0100-06832004000100011. Rodrigues PSL (2016a) Caracterização molecular e de promoção de crescimento de plantas por bactérias diazotróficas associadas à frutíferas tropicais. Campos dos Goytacazes, Tese de Doutorado, Universidade Estadual do Norte Fluminense Darcy Ribeiro, Rio de Janeiro. Rodrigues AA, Forzani MV, Soares RS, Sibov ST, Vieira JDG (2016b) Isolation and selection of plant growth-promoting bacteria associated with sugarcane. Pesq Agropec Trop 46(2):149-158. doi: 10.1590/1983-40632016v4639526. Sahasrabudhe MM (2011) Screening of rhizobia for indole acetic acid production. Ann Biol Res 2:460-468. Sambrook J, Russel DW (2001) Molecular Cloning: A laboratory Manual. New York: Cold Spring: Cold Spring Harbor. Santos ST (2008) Biogeografia de bactérias culturáveis associadas às fruteiras tropicais. Dissertação de Mestrado. Universidade Estadual do Norte Fluminense Darcy Ribeiro, Campos dos Goytacazes. Santos AFJ, Martins CYS, Santos PO, et al (2014) Diazotrophic bacteria associated with sisal (Agave sisalana Perrine ex Engelm): potential for plant growth promotion. Plant Soil 385:37-48. doi: 10.1007/s11104-014-2202-x. Santos JS, Viana TO, Jesus CM, Baldani VLD, Ferreira JS (2015) Inoculation and isolation of plant growth-promoting bacteria in maize grown in Vitória da Conquista, Bahia, Brazil. R Bras Ci Solo 39:78-85. doi: 10.1590/01000683rbcs20150725. Sarwar M, Kremer RJ (1995) Enhanced suppression of plant growth through production of L-tryptophan-derived compounds by deleterious rhizobacteria. Plant Soil 172(2):261-269. doi: 10.1007/BF00011328. Silva Filho GN e Vidor C (2000) Solubilização de fosfatos por microrganismos na presença de fontes de carbono. R Bras Ci Solo 24:311-329. Silva TF, Melloni R (2011) Densidade e diversidade fenotípica de bactérias diazotróficas não simbióticas em solos da Reserva Biológica Serra dos Toledos, Itajubá (MG). R Bras Ci Solo 35:359-371. doi: 10.1590/S0100-0683201100020007. Souza R, Ambrosini A, Passaglia LMP (2015) Plant growth-promoting bacteria as inoculants in agricultural soils. Genet Mol Biol 38(4):401-419. doi: 10.1590/S1415-475738420150053. Souza MST, Baura VA, Santos SA, Fernandes‐ Júnior PI, Junior FBR, Marques MR, Paggi GM, Brasil MS (2017) Azospirillum spp. from native forage grasses in Brazilian Pantanal floodplain: biodiversity e plant growth promotion potential. World J Microbiol Biotechnol 33:81. doi: 10.1007/s11274-017-2251-4. Suleman M, Yasmin S, Rasul M, et al (2018) Phosphate solubilizing bacteria with glucose dehydrogenase gene for phosphorus uptake and beneficial effects on wheat. PLoS ONE 13(9):e0204408. doi: 10.1371/journal.pone.0204408. Sungthongwises K (2016) Diversity of phosphate solubilizing bacteria under rubber intercropping. Asian J Plant Sci 15(3-4):75-80. doi: 10.3923/ajps.2016.75.80. Sylvester-Bradley R, Asakawa N, Torraca SLA, Magalhães FMM, Oliveira LA, Pereira RM (1982) Levantamento quantitativo de microrganismos solubilizadores de fosfatos na rizosfera de gramíneas e leguminosas forrageiras na Amazônia. Acta Amaz 12(1):15-22. doi: 10.1590/1809-43921982121015. Turner TR, James EK, Poole PS (2013) The plant microbiome. Genome Biol 14(6):209. Van Der Sand ST, Oliveira MT, Milagre LP, Minotto E (2014) Enzyme Characterization of Endophytic Actinobacteria. J Adv Sci Res 5:16-23. Versalovic J, Scneider M, De Bruijn FJ, Lupski JR (1994) Genomic fingerpriting of bacteria using repetitive sequence-based polymerase chain reaction. Methods in Mol Cell Biol 5:25-40. Videira SS, Simões-Araújo JL, Rodrigues LS, Baldani VLD, Baldani JI (2009) Occurrence and diversity of nitrogen-fixing Sphingomonas associated with rice plants grown in Brazil. FEMS Microbiol Lett 293:11-19. Zar JH (2009) Biostatistical analysis. 5ed. New Jersey, Pearson Prentice Hall.
Tipo de acesso: Acesso Restrito
URI: https://repositorio.ufms.br/handle/123456789/9710
Data do documento: 12-Jul-2019
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